تاثیر گوگرد و سه گونه قارچTrichoderm بر تفریخ تخم و مرگ و میر لارو نماتد Meloidogyne javanica در شرایط آزمایشگاهی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانش‏ آموخته کارشناسی ارشد، گروه گیاه‏پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران.

2 استادیار، گروه گیاه‏پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران.

3 استاد، گروه گیاه‏پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران.

10.22092/bcpp.2025.367974.381

چکیده

چکیده
نماتد مولد غده (Meloidogyne spp.) با 105 گونه شناخته شده و دامنه میزبانی وسیع، خسارت ‏زاترین نماتد بیماری‏زای گیاهی محسوب می‏ گردد. در مطالعه حاضر، میزان اثربخشی  گوگرد آلی و گونه ‏های قارچی Trichoderma afroharzianum، T. crassum و دو جدایه از T. harzianum بر تفریخ تخم و مرگ و میر لارو سن دو نماتد Meloidogyne javanica در بازه‏ های زمانی مختلف و در قالب طرح پایه کاملاً تصادفی با پنج تکرار در شرایط آزمایشگاه مورد بررسی قرار گرفت. اثر عصاره‏ ی قارچ‏ ها در سه سطح پایه ،0/1 و 0/01 در دو آزمایش مجزا بر روی مرگ و میر لارو سن دو نماتد پس از 24، 48 و 72 ساعت و نیز تفریخ تخم‏ پس از 2، 4، 6 و 8 روز مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج بررسی‏ ها نشان داد مؤثرترین تیمار، گونه T. carssum می‏ باشد که در غلظت پایه و زمان 72 ساعت موجب مرگ و میر لارو سن دو M. javanica به میزان 83/3 درصد و در غلظت پایه و زمان هشت روز باعث جلوگیری از تفریخ تخم ‏ها به میزان 63/1 درصد گردید.  


.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Al–Shammari, T.A., Bahkali, A.H., Elgorban, A.M., El–Kahky, M.T. & Al–Sum, B.A. 2013. The use of Trichoderma longibrachiatum and Mortierella alpina against root–knot nematode, Meloidogyne javanica on tomato. Journal of Pure and Applied Microbiology, 7: 199–207.
Cherif, M. & Benhamou, N. 1990. Cytochemical aspects of chitin breakdown during the parasitic action of a Trichoderma sp. on Fusarium oxysporum f. sp. radicis–lycopersici. Phytopathology, 80(12): 1406–1414.
Durrant, W.E. & Dong, X. 2004. Systemic acquired resistance. Annual Review Phytopathology, 42: 185–209.
‏Fatemy, S. 1998. Antagonistic activity of Paecillomyces fumosoroseus against Meloidogyne javanica and Heterodera schachtii. Iranian Journal of Plant Pathology, 34: 67–75.
‏‏‏Goswami, B.K. & Uma, R. 1997. Studies on different isolates of Paecilomyces lilacinus collected from different agroclimatic regions in India. Indian Journal of Nematology, 27(2): 238–240.
‏Hussey, R.S. & Barker, K.R. 1973. A comparison of methods of collecting inocula of Meloidogyne spp., including a new technique. Plant Disease Reporter, 57: 1025–1028.
Jones, J.T., Haegeman, A., Danchin, E.G., Gaur, H.S., Helder, J., Jones, M.G. & Perry, R.N. 2013. Top 10 plant‐parasitic nematodes in molecular plant pathology. Molecular plant pathology, 14(9): 946–961.
‏Khalil, M.S.E.D.H., Allam, A.F.G. & Barakat, A.S.T. 2012. Nematicidal activity of some biopesticide agents and microorganisms against root–knot nematode on tomato plants under greenhouse conditions. Journal of Plant Protection Research, 52(1).
‏Khan, R.A.A., Najeeb, S., Hussain, S., Xie, B. & Li, Y. 2020. Bioactive secondary metabolites from Trichoderma spp. against phytopathogenic fungi. Microorganisms, 8(6): 817.
‏Khan, Z., Kim, S.G., Jeon, Y.H., Khan, H.U., Son, S.H. & Kim, Y.H. 2008. A plant growth promoting rhizobacterium, Paenibacillus polymyxa strain GBR–1, suppresses root–knot nematode. Bioresource Technology, 99(8): 3016–3023.
Li, Y., Stirling, G.R. & Seymour, N.P. 2017. The effect of organic amendment input and crop management practices on the nematode community and suppression of root–lesion nematode (Pratylenchus thornei) in a grain–growing soil. Australasian Plant Pathology, 46(5): 463–472.
‏Mascarin, G.M., Junior, M.F.B. & de Araújo, J.V. 2012. Trichoderma harzianum reduces population of Meloidogyne incognita in cucumber plants under greenhouse conditions. Journal of Entomology and Nematology, 4(6): 54–57.
‏Nicol, J.M., Turner, S.J., Coyne, D.L., Nijs, L.D., Hockland, S. & Maafi, Z.T. 2011. Current nematode threats to world agriculture. Genomics and Molecular Genetics of Plant–Nematode Interactions, 21–43.
‏Noweer, E.M.A. & Hasabo, S.A. 2005. Effect of different management practices for controlling root–knot nematode Meloidogyne incognita on squash. Egyptian Journal of Phytopathology, 33(2): 73–81.
‏‏Prusky, D. 2003. Pathogenic fungi: leading or led by ambient pH. Molecular Plant Pathology, 4(6): 509–516.
‏Seifi, S. & Karegar Bide, A. 2013. Effect of mineral fertilizers on cereal cyst nematode Heterodera filipjevi population and evaluation of wheat. World Applied Programming, 3(4): 137–141.
‏Sharon, E., Chet, I., Viterbo, A., Bar–Eyal, M., Nagan, H., Samuels, G.J. & Spiegel, Y. 2007. Parasitism of Trichoderma on Meloidogyne javanica and role of the gelatinous matrix. European Journal of Plant Pathology, 118: 247–258.
‏Sikora, R.A., Schäfer, K. & Dababat, A.A. 2007. Modes of action associated with microbially induced in planta suppression of plant–parasitic nematodes. Australasian Plant Pathology, 36: 124–134.‏
Smith, K.P., Handelsman, J. & Goodman, R.M. 1997. Modeling dose–response relationships in biological control: partitioning host responses to the pathogen and biocontrol agent. Phytopathology, 87(7): 720–729.‏
Spiegel, Y. & Chet, I. 1998. Evaluation of Trichoderma spp. as a biocontrol agent against soilborne fungi and plant–parasitic nematodes in Israel. Integrated Pest Management Reviews, 3:169–175.
Suarez, B., Rey, M., Castillo, P., Monte, E. & Llobell, A. 2004. Isolation and characterization of PRA1, a trypsin–like protease from the biocontrol agent Trichoderma harzianum CECT 2413 displaying nematicidal activity. Applied Microbiology and Biotechnology, 65: 46–55.‏
Trudgill, D.L. & Blok, V.C. 2001. Apomictic, polyphagous root–knot nematodes: exceptionally successful and damaging biotrophic root pathogens. Annual Review of Phytopathology, 39(1): 53–77.
‏Vinale, F., Sivasithamparam, K., Ghisalberti, E.L., Marra, R., Woo, S.L. & Lorito, M. 2008. Trichoderma–plant–pathogen interactions. Soil Biology and Biochemistry, 40(1): 1–10.‏
Whitehead, A.G. & Hemming, J.R. 1965. A comparison of some quantitative methods of extracting small vermiform nematodes from soil. Annals of applied Biology, 55(1): 25–38.‏