اثرات کشندگی چند حشره‌کش گیاهی و شیمیایی روی شته گندم Sitobion avenae و مگس گل Episyrphus balteatus

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسنده

استادیار، موسسه تحقیقات گیاه‌پزشکی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران.

10.22092/bcpp.2025.368278.385

چکیده

حشره­‌کش­ها می­‌توانند علاوه بر آفات، موجودات غیرهدف را نیز تحت تاثیر قرار دهد. شته‌های گندم از آفات مهم گندم هستند که علاوه بر تغذیه از شیره گیاهی، باعث انتقال بیماری‌های ویروسی نیز می‌شوند. در این پژوهش، اثرات کشندگی چند حشره­‌کش توصیه شده علیه آفات گندم روی شته سبز گندم Sitobion avenae و مراحل حشره کامل و شفیره مگس گل Episyrphus balteatus مورد بررسی قرار گرفت. آزمایش در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار در شرایط آزمایشگاهی با دمای 2 ± 2۴ درجه سلسیوس، رطوبت نسبی 60–50 درصد و دوره نوری 8 : 16 (تاریکی: روشنایی) انجام شد. تیمارها شامل حشره‌­کش‌های فنیتروتیون در غلظت توصیه شده (۲ در هزار) و دو غلظت کمتر (0/5 و 1 در هزار)، دلتامترین در غلظت توصیه شده (0/7 در هزار) و دو غلظت کمتر (0/15 و 0/3 در هزار)، ماترین در غلظت توصیه شده (1/5 در هزار) و سه غلظت دیگر (0/7، 1 و 2 در هزار) و شاهد (آب) بودند. درصد مرگ و میر شته‌ها و مگس گل بررسی و حشره­‌کش­ها، طبق روش IOBC گروهبندی شدند. نتایج نشان داد تمام حشره‌کش‌های مورد مطالعه سبب تلفات ۱۰۰ درصدی شته‌های گندم شدند. همه تیمارها برای حشرات کامل مگس گل زیان­‌آور بودند، به‌جز کمترین غلظت ماترین که نسبتا زیان‌­آور بود. بیشترین اثر سوء برای شفیره مگس گل ناشی از فنیتروتیون 2 در هزار بود که سبب 32/32 درصد تلفات شد اما با کاهش غلظت مصرفی، میزان کشندگی به طور معنی­‌داری کاهش یافت. دلتامترین 0/7 در هزار  و ماترین 2 در هزار به ترتیب سبب تلفات 19/39 و 13/47 درصدی مگس گل شدند در حالی که غلظت­‌های پایین‌­تر این ترکیبات تلفاتی ایجاد نکردند. بر مبنای نتایج، لازم است ضمن پرهیز از افزایش غلظت مصرفی، از کاربرد حشره­‌کش­های دلتامترین، فنیتروتیون و ماترین در زمان اوج جمعیت مگس گل اجتناب شود. با توجه به این که مگس‌های گل  نقش مهمی در مهار زیستی شته‌ها دارند، ضروری است که در برنامه‌های مدیریت آفات، اثرات حشره‌کش‌ها بر این حشرات مورد توجه قرار گیرد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Basley, K., Davenport, B., Vogiatzis, K. & Goulson, D. 2018. Effects of chronic exposure to thiamethoxam on larvae of the hoverfly Eristalis tenax (Diptera: Syrphidae). PeerJ, 6: e4258. https://doi.org/10.7717/peerj.4258
Belay, T. & Araya, A.L.E.M.U. 2015. Grain and biomass yield reduction due to Russian wheat aphid on bread wheat in northern Ethiopia. African Crop Science Journal, 23: 197–202.
Blackman, R.L. & Eastop, V.F. 2000. Aphids on the Worlds Crops. An Identification and Information Guide. 2nd eds, John Wiley and Sons Ltd., UK, 466 pp.
Bubniewicz, P., Mrowczynski, M., Stepniewski, J. & Sienkowski, A. 1990. Effectiveness and profitability of aphid control in cereals. Materials of the Session of the Plant Protection Institute, 30: 93–105.
Cura, M.S. & Gençer, N.S. 2019. Side effects of azadirachtin on some important beneficial insects in laboratory. Journal of Biological and Environmental Sciences, 13: 39–47.
Dewar, A.M. & Foster, S.P. 2017. Overuse of pyrethroids may be implicated in the recent BYDV epidemics in cereals. Outlooks on Pest Management, 28: 7–12.
El–Wakeil, N.E., Gaafar, N. & Volkmar, C. 2014. Effects of some botanical insecticides on wheat insects and their natural enemies in winter and spring wheat. Acta Advances in Agricultural Sciences, 2: 19–36.
Foster, S.P., Paul, V.L., Slater, R., Warren, A., Denholm, I., Field, L.M. & Williamson, M.S. 2014. A mutation (L1014F) in the voltage–gated sodium channel of the grain aphid, Sitobion avenae, is associated with resistance to pyrethroid insecticides. Pest Management Science, 70: 1249–1253.  DOI: 10.1002/ps.3683
Fritz, L.L., Heinrichs, E.A., Machado, V., Andreis, T.F., Pandolfo, M., De Salles, S.M., De Oliveira, J.V. & Fiuza, L.M. 2013. Impact of lambda cyhalothrin on arthropod natural enemy populations in irrigated rice fields in southern Brazil. International Journal of Tropical Insect Science, 33: 178–187. DOI: https://doi.org/10.1017/S1742758413000192
Hirano, M. 1989. Characteristics of pyrethroids for insect pest control in agriculture. Pesticide Science, 27: 353–360.
Jackson, G.E., Malloch, G., McNamara, L. & Little, D. 2020. Grain aphids (Sitobion avenae) with knockdown resistance (kdr) to insecticide exhibit fitness trade–offs, including increased vulnerability to the natural enemy Aphidius ervi. PLoS One, 15: e0230541. doi: 10.1371/journal.pone.0230541
Jansen, J.P. 1998. Side effects of insecticides on larvae of the aphid specific predator Episyrphus balteatus (De Geer) (Dipt; Syrphidae) in the laboratory. Medicine and Health Sciences, 63: 585–592.
Jansen, J.P., Defrance, T., & Warnier, A.M. 2011. Side effects of flonicamide and pymetrozine on five aphid natural enemy species. BioControl, 56: 759–770. https://doi.org/10.1007/s10526–011–9342–1
Khan, A.A. & Reyaz, S. 2017. Effect of insecticides on distribution, relative abundance, species diversity and richness of syrphid flies in vegetable ecosystem of Kashmir. Journal of Entomology and Zoology Studies, 5: 808–817.
Leclercq–Le, F., Tanguy, S. & Dedryver, C.A. 1995. Aerial flow of barley yellow dwarf viruses and of their vectors in western France. Annals of Applied Biology, 126: 75–90.
Malloch, G. Foster, S. & Williamson, M. 2016: Monitoring pyrethroid resistance (kdr) and genetic diversity in UK populations of the grain aphid, Sitobion avenae during 2015. Agriculture and Horticulture Development Board, 1–26.
Moens, J., De Clercq, P. & Tirry, L. 2011. Side effects of pesticides on the larvae of the hoverfly Episyrphus balteatus in the laboratory. Phytoparasitica, 39: 1–9. https://doi.org/10.1007/s12600–010–0127–3.
Munkhbayar, O., Zhu, J., Li, M., Chultem, C., Mijidsuren, B. & Qiu, X. 2021. Occurrence and insecticide susceptibility of the grain aphid Sitobion avenae in northern Mongolia. Proceedings of the Mongolian Academy of Sciences, 29: 1–8. DOI: 10.5564/pmasv61i04.1926
Nourbakhsh S. 2022. List of important pests, diseases and weeds of major agricultural products, chemicals and recommended ways for their control. Plant Protection Organization, Ministry of Agriculture Jihad. Tehran, Iran, 221 pp. (In Farsi).
Parsaeyan, E., Saber, M., Safavi, S.A., Poorjavad, N. & Biondi, A. 2020. Side effects of chlorantraniliprole, phosalone and spinosad on the egg parasitoid, Trichogramma brassicae. Ecotoxicology, 29: 1052–1061. https://doi.org/10.1007/s10646–020–02235–y
Rasheed, M.A., Khan, M.M., Hafeez, M. Zhao, J. Islam, Y. Ali, S. Ur–Rehman, S. E–Hani, U. & Zhou, X. 2020. Lethal and sublethal effects of chlorpyrifos on biological traits and feeding of the aphidophagous predator Harmonia axyridis. Insects, 11: 491. https://doi.org/10.3390/insects11080491
Santos, K.F.A., Zanardi, O.Z., De Morais, M.R., Jacob, C.R.O., De Oliveira, M.B. & Yamamoto, P.T. 2017. The impact of six insecticides commonly used in control of agricultural pests on the generalist predator Hippodamia convergens (Coleoptera: Coccinellidae). Chemosphere: 186: 218–226. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2017.07.165
Schmidt–Jeffris, R.A. 2023. Nontarget pesticide impacts on pest natural enemies: Progress and gaps in current knowledge. Current Opinion in Insect Science, 58: 101056. https://doi.org/10.1016/j.cois.2023.101056
Serrão, J.E., Plata–Rueda, A., Martínez, L.C. & Zanuncio, J.C. 2022. Side–effects of pesticides on non–target insects in agriculture: A mini–review. The Science of Nature, 109: 17. https://doi.org/10.1007/s00114–022–01788–8.
Simirnova, G.V. & Kalabina, K.S. 1991. Efficacy of different insecticides used in aerial spraying against Eurygaster and English grain aphid. Ekologicheskie Osnovy Primeneniya Insektoakaritsidov, 116–118. (In Russian with English abstract)
Sommaggio, D. & Burgio, G. 2014. The use of Syrphidae as functional bioindicator to compare vineyards with different managements. Bulletin of Insectology, 67:147–156.
Sterk, G., Hassan, S.A., Baillod, M., Bakker, F., Bigler, F., Blümel, S., Bogenschütz, H., Boller, E., Bromand, B., Brun, J. & Calis, J.N.M. 1999. Results of the seventh joint pesticide testing programme carried out by the IOBC/WPRS–Working Group Pesticides and Beneficial Organisms. BioControl, 44: 99–117. https://doi.org/10.1023/A:1009959009802
Tillman, P.G. & Mulrooney, J.E. 2000. Effect of selected insecticides on the natural enemies Coleomegilla maculata and Hippodamia convergens (Coleoptera: Coccinellidae), Geocoris punctipes (Hemiptera: Lygaeidae), and Bracon mellitor, Cardiochiles nigriceps, and Cotesia marginiventris (Hymenoptera: Braconidae) in cotton. Journal of Economic Entomology, 93: 1638–1643. DOI: 10.1603/0022–0493–93.6.1638
Tunca, H., Kilinçer, N. & Özkan, C. 2012. Side–effects of some botanical insecticides and extracts on the parasitoid, Venturia canescens (Grav.) (Hymenoptera: Ichneumonidae). Türkiye Entomoloji Dergisi, 36: 205–214.
Wang, H., Lu, Y., Chen, J., Li, J. & Liu, S. 2012. Subcritical water extraction of alkaloids in Sophora flavescens Ait. and determination by capillary electrophoresis with field–amplified sample stacking. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 58: 146–151. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2011.09.014
Wiles, J.A. & P.C. Jepson, 1995. Dosage reduction to improve the selectivity of deltamethrin between aphids and coccinellids in cereals. Entomologia experimentalis et applicata, 76: 83–96. https://doi.org/10.1111/j.1570–7458. 1995.tb01948.x
Zhang, X., An, Z., Guo, Y., Feng, Y. & Shi, W. 2014. Biodiversity of natural enemies in pear orchards as affected by pest management methods. Chinese Journal of Biological Control, 30: 188–193. (In Chines with English abstract)