اثر بازدارندگی برخی جدایه‌های باکتری Pseudomonas fluorescens بر نماتد ریشه‌گرهی گوجه‌فرنگی، Meloidogyne incognita

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 عضو هیات علمی دانشگاه یاسوج

2 دانشجوی کارشناسی ارشد بیماری شناسی گیاهی

3 عضو هیات علمی بخش کشاورزی دانشگاه پیام نور، تهران، ایران

چکیده

نماتد ریشه‌گرهی به لحاظ خسارتی که در سطح جهانی به گونه‌های مختلف گیاهی وارد می‌کند، از مهم‌ترین نماتدهای بیماری‌زا در گیاهان می‌باشد. به‌دلیل مضر بودن نماتدکش‌های شیمیایی برای سلامتی انسان و محیط زیست، تحقیقات برای پیدا کردن روش‌های جدید مدیریت جمعیت نماتدهای انگل گیاهی که با محیط سازگاری داشته باشد، اهمیت پیدا کرده است. این تحقیق با هدف بررسی اثر جدایه‌های مختلف باکتری P. fluorescens در مدیریت نماتد ریشه‌گرهی انجام شد. در این بررسی اثر 9 جدایه باکتری P. fluorescens بر نماتد ریشه‌گرهی در آزمایشگاه و گلخانه مورد مطالعه قرار گرفت. نتایج نشان داد که تمامی جدایه‌های مورد بررسی در آزمایشگاه باعث ایجاد مرگ و میر لارو سن دوم نماتد شدند، ولی میزان مرگ و میر در تیمارهای مختلف در سطح یک درصد اختلاف معنی‌دار داشت. هرچند که جدایه‌های مختلف از نظر خاصیت نماتدکشی دارای توانایی متفاوتی بودند. در گلخانه نیز اکثر جدایه‌های مورد بررسی گال‌زایی و تکثیر نماتد را کاهش دادند. از نظر کاهش فاکتور تولید مثل نماتد، جدایه‌های 2 و 16 که از خاک ناحیه‌ی ریزوسفر در شهرستان بویراحمد جداسازی شده بودند، نسبت بهP. fluorescens CHA0 مؤثرتر بودند. تقریباً هیچ‌کدام از جدایه‌ها قادر به افزایش شاخص‌های رشدی گیاه در مقایسه با شاهد آلوده نبودند.

 



 

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Abo-Elyousr, K.A., Khan, Z., El-Morsi Award M. & Abedel-Moneim, M.F. 2010. Evaluation of plant extracts and Pseudomonas spp. for control of root-knot nematode, Meloidogyne incognita on tomato. Nematropica, 40(2): 289-299.
Agrios, G.N. 2005. Plant Pathology, Fifth Edition. San Diego, CA: Elsevier Academic Press, 922 pp.
Almaghrabi, O.A., Massoud, S.I. & Abdelmoneim, T.S. 2013. Influence of inoculation with plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) on tomato plant growth and nematode reproduction under greenhouse conditions. Saudi Journal of Biological Sciences, 20: 57-61.
Aneja, K.R., 2001. Experiments in Microbiology, Plant Pathology, Tissue Culture and Mushroom Production Technology. New Age International Limited Publishers, 3nd ed. New Delhi, India.
Ashoub, A.H. & Amara, M.T. 2010. Biocontrol activity of some bacterial genera against root-knot nematode, Meloidogyne incognita. Journal of American Science, 6(10): 321-328.
Bagheri, N., Ahmadzadeh, M. & Heydari, R. 2014. Effects of Pseudomonas fluorescens strain UTPF5 on the mobility, mortality and hatching of root-knot nematode Meloidogyne javanica. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 47(6): 744-752.
Elahinia, A. 2007. Vegetable and Cucurbit Diseases and Their Control. 2nd Ed. Guilan University Press, Rasht, Iran. 582 pp.
Hugh, R. & Leifson, E. 1953. The taxonomic significance of fermentative versus oxidative metabolism of carbohydrates by various Gram negative bacteria. Journal Bacteriology, 66: 24-26.
Hussay, R.S. & Barker, K.R. 1973. A compression of methods of collecting inocula of Meloidogyne spp. including a new technique. Plant Disease Reporter, 57: 1025-1028.
Jacquet, M., Bongiovanni, M., Martinez, M., Verschave, P., Wajnberg, E. & Castagnone-Sereno, P. 2005. Variation in resistance to the root-knot nematode Meloidogyne incognita in tomato genotypes bearing the Mi gene. Plant Pathology, 54: 93- 99.
Jatala, P. 1985. Biological control of nematodes. pp. 303-308. In: Sasser, J.N. & Carter, C.C. (eds.), An Advanced Treatise on Meloidogyne, Volume I: Biology and Control. North Carolina State University.
Jonathan, E.I., Barker, K.R., Abdel-Alim, F.F., Vrain, T.C. & Dickson, D.W. 2000. Biological control of Meloidogyne incognita on tomato and banana with rhizoobacteria, Actinomycetes and Pasteuria penetrans. Nematropica, 30: 231-240.
Jonathan, E.I., Sandeep, A., Cannayane, I. & Umamaheswari. R. 2006. Bioefficacy of Pseudomonas fluorescens on Meloidogyne incognita in banana. Nematologia Mediterranea, 34: 19-25.
Keel, Ch., Schnider, U., Maurhofer, M., Voisard, Ch., Laville, J., Burger, U., Wirthner, Ph., Haas. D. & Defago, G. 1992. Suppression of root disease by Pseudomonas fluorescens CHA0: Importance of the bacterial secondary metabolite 2, 4-diacetylphloroglucinol. Molecular plant-Microbe Interaction, 5(1): 4-13.
Khalighi S. & Khodakaramian G. 2010. Biocontrol of Meloidogyne javanica inducing olive root-knot under green-house conditions and by use of Fluorescent Pseudomonads. Iranian Journal of Plant Protection Science, 43(2): 323-332.
Khalighi S., Khodakaramian G., Tanha-Maafi Z., Hossaini S.A. & Ghasemi A. 2010. Inhibition of gall formation of Meloidogyne javanica on tomato using fluorescent pseudomonads under green-house condition. Applied Entomology and Phytopathology, 78(2): 177-198.
Khodaei Arbat, A., Taheri, A.H. Pahlevani, M.H. & Niknam, GH. R. 2009. Evaluation of tomato cultivars resistance to root-knot nematode (Meloidogyne javanica Chitwood, 1949). Journal of Plant Production, 16(1): 45-55.
Khoshkhoy, M., Sheibani, B., Rohani, E. & Tafazzoli, E. 2010. Principles of Horticulture. Shiraz University Press, Shiraz, Iran, 596 pp.
Klement, Z., Farkas, G.L. & Lovrekovich, L. 1964. Hypersensitivity reaction induced by phytopathogenic bacteria in the tobacco leaf. Phytopathology, 54: 474-477.
Majzoob, Sh., Kargar, A., Hamzehzarghani, H., Taghavi, M. & Charegani, H. 2012. The effect of the rhizobacteria on root-knot nematode (Meloidogyne javanica) on cucumber under greenhouse condition. Iranian Journal of Plant Pathology, 48: 69-84.
Maurhofer, M., Keel, C., Haas, D. & Défago, G. 1995. Influence of plant species on disease suppression by Pseudomonas fluorescens strain CHA0 with enhanced antibiotic production. Plant Pathology, 44: 40–50.
Mohamed, Z.K., El-Sayed, S.A., Radwan, T.E.E. & Abd El-Wahab G.S. 2009. Potency evaluation of Serratia marcescens and Pseudomonas fluorescens as biocontrol agents for root-knot nematodes in Egypt. Journal of Applied Sciences Research, 4(1): 93-102. 
Mokhtari, S., Sahebani, N. & Etebarian, H.R. 2009. Study on biological control and systemic induction of peroxidase enzyme activity in tomato plant infected with root-knot nematode (Meloidogyne javanica) by Pseudomonas fluorescens CHA0 antagonist. Journal of Agriculture, 11(1): 151-161.
Sasser, J.N. & Carter, C.C. 1985. Overview of the international Meloidogyne project 1975-1984. pp. 19-24. In: Sasser, J.N. & Carter, C.C. (eds.), An Advanced Treatise on Meloidogyne, Volume I: Biology and Control. North Carolina State University.
Sankari, M.K., Jonathan, E.I., Devrajan, K. & Raguchander, T. 2012. Pseudomonas fluorescens induced systemic resistance in tomato against Meloidogyne incognita. Indian Journal of Nematology, 42(1): 5-10.
Scarpellini, M., Franzetti, L. & Galli, A. 2004. Development of PCR assay to identify Pseudomonas fluorescens and its biotype. FEMS Microbiology Letters, 236: 257-260.
Schaad, N.W., Jones, J.B. & Chun, W. 2001. Laboratory Guide for Identification of Plant Pathogenic Bacteria. 3nd edition. The American Phytopathological Society, St. Paul, Minnesota, USA.
Siddiqui, I.A., Haas, D. & Heeb, S. 2005. Extracellular protease of Pseudomonas fluorescens CHA0, a biocontrol factor with activity against the root-knot nematode Meloidogyne incognita. Applied and Environmental Microbiology, 71(9): 5646-5649.